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Additional Mouse on 8-week protocol

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Service
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Services - Custom Antibodies
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ProSci
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Services > Custom Antibodies
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    流式细胞仪(flow cytometer)是一种能够探测和计数以单细胞液体流形式穿过激光束的细胞检测装置,由于在检测中使用的细胞标志示踪物质为荧光标记物,因此,用来分离、鉴定细胞的流式细胞仪有被称为荧光激活细胞分类仪,是分离和鉴定细胞群及亚群的一种强而有力的应用工具。 查看更多>
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    品牌 | Millipore 密理博| BECKMANCOULTER贝克曼库尔特 BECKMANCOULTER贝克曼库尔特Gallios 流式细胞仪 市场价:¥0.00元 会员价:¥0.00元 品牌:BECKMANCOULTER贝克曼... 查看更多>
    流式细胞术(flow cytometry,FCM)自70年代中期就成为研究细胞生物学的重要技术,至今己被广泛应用于肿瘤学、免疫学、血液学、药物学等领域。FCM能对大数量的单个细胞同时进行多个物理和化学参数检测,其中包括细胞的大小、细胞内颗粒、细胞复杂性和细胞的相对荧光强度等。<br>我科使用美国BD公司生产的FACSC-ALIBUR流式细胞仪已有1年多,我们认为该仪器的性能稳定,操作简便,电脑软件设计较 ... 查看更多>
    流式细胞仪常用的几种检测方法一、测定用乙醇固定的DNA的含量1、培养细胞的DNA含量的测定制备单细胞悬液于200μl的PBS缓冲液中;加入2ml预冷的70%乙醇,4℃保存;附:细胞固定的一般步骤1) 取单细胞悬液1~2×106个细胞于PBS(PH=7.2)缓冲液中;2) 300g离心5分钟,弃上清,反复两次;3) 重 查看更多>
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    2个公司几乎垄断了流式细胞仪。一个是BD. 还有一个是Beckman Coulter,要是做分析的话两家都差不多,要是做分选的话就选BD的aria 2/3,贝克曼的分选MOFLO价格太贵了,而且因为其太过于专业,分选操作没有BD的方便快捷。

    最近刚开始做实验,想用双染法流式细胞仪检测不同浓度药物对肿瘤细胞凋亡的影响

    按照要求检测时设置如下组别:

    1.阴性对照组不染

    2.补偿1组AV单染

    3.补偿2组PI单染

    4.无药物处理组双染

    5.药物浓度A组双染

    6.药物浓度B组双染


    那请问1.2.3组的细胞来源是什么?有前辈说应该是4.5.6三组的混合细胞,请问是这样吗?还是用4.组的即可?

    另外还有几个小问题:

    1.如果检测当天机器坏了,我在哪一步可以用什么固定来推迟检测?听说可以用PFA,多少浓度的?需固定多长时间?多长时间内检测有效?

    2.检测前需要在冰上操作吗?

    3.对于贴壁细胞,用胰酶消化后,是先吸除胰酶再加培养液,还是消化后直接加培养液?因为感觉吸除胰酶时会不会不小心吸掉一部分细胞?(碧云天的试剂盒的说明书也不一样,AnnexinV-FITC细胞凋亡检测试剂盒说需吸除胰酶,但细胞周期与细胞凋亡检测试剂盒中说直接加培养液)


    横坐标是DNA染料PI收到波长为488nm的激光激发后所放出的荧光强度。

    流式细胞仪(Flow cytometry )是对细胞进行自动分析和分选的装置。它可以快速测量、存贮、显示悬浮在液体中的分散细胞的一系列重要的生物物理、生物化学方面的特征参量,并可以根据预选的参量范围把指定的细胞亚群从中分选出来。多数流式细胞计是一种零分辨率的仪器,它只能测量一个细胞的诸如总核酸量,总蛋白量等指标,而不能鉴别和测出某一特定部位的核酸或蛋白的多少。也就是说,它的细节 分辨率为零。
    现代的流式细胞仪都可以同时测量10多个甚至更多的颜色。已经不再使用FL1,FL2这样的名称了。

    而一些老式 的机器,由于装备的激光数量和检测器都很有限,比如BD calibur这款机器。最高配置也就是蓝色(488nm)和红色(647nm)两种激光。检测4种颜色(通道)。所以为方便起见,就命名为FL1,FL2, FL3和FL4。前三种由于蓝色激光,FL4用于检测红色激光所激发的荧光。其中FL1是检测绿色荧光的(比如FITC,荧光素或者绿色荧光蛋白),而FL2是检测橙色荧光的(比如PI染色)。
    流式细胞仪检测为什么要裂解红细胞?红细胞会干扰其他白细胞的检测么?可以不裂解通过流式区分红细胞和白细胞么?流式能够计数红细胞么?

    最近使用流式细胞仪,听到管理仪器的人说流式细胞仪的技术不就是调电压吗?表示很无奈,自己作为新手,很多也都不会,RAW和hela细胞的凋亡检测也不会,raw之前有人帮我调了一下,感觉还好,可是hela细胞就是fsc和ssc的二维图中的点很分散,圈细胞群后(control组不知为啥分两群了,实验组很分散)。用索莱宝的凋亡检测试剂盒检测后,不知为啥图中的细胞形成一条线。实验结果基本没用。现在快失去科研兴趣了,早上五点多起来做实验,晚上也没吃晚饭,哎,,想哭!

    流式细胞仪中,用PI单染法区分死细胞和活细胞,怎么看数据结果?


    这个和你要配置的激光数量,功率,有没有气溶胶控制系统都有关系,范围很大啊。还和你单位和BD的合同是否有折扣有关。

    我有过两台,一台配有三色激光,当时的报价将近40万美元,最近买的另外一台,两个激光,30万美元。
    很简单的啊。
      流式细胞仪数据分析
      5.1 数据采集及显示
      光信号转换成电压脉冲后,再通过模数转换器转换成为计算机能够储存处理的数字信号。 流式细胞仪的数据以FSC标准格式存储,该标准由“分析细胞学协会”制定。
      根据FSC标准,数据存储格式应包括三个文件:样本获取文件,数据设置文件和数据分析结果。 4参数(FSC,SSC,FITC和PE)的单细胞分析会生成8位数据。当单个样品累计收集到10000个细胞时,FCS数据文件为80kB.
      数据采集存储完毕后,细胞亚群可以几种不同格式显示。单参数如FSC或FITC(FL1)可使用直方图,横轴表示荧光通道。纵轴表示在该通道内收集到的细胞数量(如图5-1)。处在同一通道的每一细胞均符合该通道的信号值,而且具有相同的信号密度。通道右侧信号的荧光强度明显高于左侧,越靠右侧荧光亮度越强。 图5-1 流式数据分析图
      双参数可在二维散点图中同时显示,X轴显示通道1(FL1),Y轴显示通道2(FL2)。3维图通过X,Y,Z三个轴分别显示每个通道的细胞量(如图5-1)。
      习题:数据采集及显示
      1 在直方图中横轴和纵轴分别表示 .
      2 二维点图用于显示 参数。
      3 在CellQuest软件中3维图中Z轴代表 .
      5.2 设门
      通过设门的方法可以定义细胞亚群的区域。如:血样本是混合细胞群,如果想单独分析淋巴球细胞,可根据FSC或细胞大小,在FSC,SSC的散点图中设门,其数据结果只反映淋巴细胞亚群的荧光特性。 图5-2 全血样本中淋巴细胞亚群的数据分析图
      习题:设门
      1 设门的方法通常用于分析样本内的指定细胞。(对 错)
      5.3 细胞亚群的数据分析
      数据分析包括从点图中的list-mode文件中显示数据,然后统计点图中的细胞分布情况。如前所述,分别有几种形式的点图用于显示数据,而且可通过设门的方法区分指定的细胞亚群。 如图5-3所示,在淋巴细胞亚群周围设门,以单独分析或分选该亚群细胞。
      图5-3 选定淋巴细胞亚群设门
      门内细胞的数据结果可在随后的图中显示。在下面的实例中,我们将详尽阐述细胞亚群百分含量的不同分析方法。 我们可以通过单参数直方图,二维点图和三维图来分析结果。单参数直方图可定位边界,二维点图可设置象限标志。如果需要,还可以建立数据统计表以输出结果。 直方图可直观单个参数的细胞数量。阴性对照用于决定直方图中单参数的左右边界(见图5-4)。左图中M1为阴性对照峰。右图中M2为CD3 FITC阳性峰。
      图5-4 阴性对照峰M1(NORM001)和CD3 FITC阳性峰M2(NORM002) 图5-5的统计结果表明,整个事件共记录了6000个细胞,门内淋巴细胞2891个。其中M1(阴性)细胞619个,M2(CD3阳性)细胞2272个细胞。淋巴细胞亚群CD3阳性百分含量的统计结果为:M2:2272/2891=78.59%.
      图5-5 直方图统计结果
      二维点图以双参数显示结果,每个点表示一个或多个细胞。图5-6为阴性对照图,用于设定阴性对照边界,全图划分为四个象限,以区分阴性细胞、单阳性细胞以及双阳性细胞。左下象限(LL)为双阴性细胞,左上象限(UL)为Y轴阳性细胞(CD19 PE),左下象限(LR)为X轴阳性细胞(CD3 FITC),右上象限(UR)为双阳性细胞(CD19+/CD3+)。
      图5-6 阴性对照组(NORM001)和CD3 FITC/CD19 PE双染样本(NORM002) 如图5-7所示,淋巴细胞亚群双阳性细胞(CD19+/CD3+)的百分含量为:296/2839=10.43%.
      图5-7 散点图统计结果 另一个分析方法是划定区域,也就是设门。我们可以用不同形状的绘图工具定义所选区域(如图5-8所示);然后统计该区域内指定细胞亚群的百分含量。在图5-9中,R4门内为CD4阳性,CD3阴性的淋巴细胞亚群,其结果为:40/2866=1.40%.
      图5-8 CD3 FITC/CD4 PE 双染样本分析图 图5-9 CD3 FITC/CD4 PE 双染样本数据统计结果
      这种方法在分析不同的供体细胞时存在一个缺陷,因为如果事先定义好细胞亚群的区域或边界,在随后的文件中,下一个样本的细胞亚群位置会发生变化,这就需要操作者重新调整区域或边界位置。 为避免这种情况的发生,我们采用一种称为集群分析(cluster analysis)的新方法。BD公司的MultiSETTM 和AttractorsTM软件就属于集群分析软件。该软件的特点是会随着整个细胞亚群的移动而移动,自动变换区域或边界到相应的细胞亚群位置(见图5-10)。
      图5-10 使用Attractors分析软件时二维点图的前后变化对比
      5.4 流式细胞仪的其它应用以及数据分析
      这些分析方法通常适用于计算离散细胞群的百分含量,对于分析单克隆细胞株分子是否呈阳性并不适用。因为单克隆细胞株是单个细胞群,在大多数情况下,既不是100%阴性,也不是100%阳性,所以我们通过几何均值法和中位法统计细胞荧光密度和阳性率。如果样本的统计结果远远大于阴性对照组,那么我们认为其结果是阳性的,两者间的差异越大,说明细胞的表达越高,阳性率越高。 如图5-11所示,左图为单细胞群的散射光信号,右图为阴性对照组和两种不同抗体染色样本的峰叠加图。每个峰的几何均值分别为2,5和20(从左至右)。
      图5-11 单细胞株分析图 除检测阳性率,几何均值法和中位法还用于分子(接合子)定量分析。
      QuantiCALCTM软件就是使用中值法计算每个细胞的抗体结合位点数。如图5-12所示,Y轴上的圆圈代表从标准曲线获取的信息,用于计算每个细胞的接合点位数。 图5-12 使用QuantiCALC软件计算每个细胞的抗体结合位点数 我们使用ModFit LTTM软件进行DNA定量分析。因为DNA峰(G0/G1期,S期和G2M期)不是离散的,所以我们对曲线以下的面积进行积分,以得到每个细胞亚群的百分含量结果。
      图5-13 细胞周期的DNA直方图
      习题:数据分析
      1二维点图和一维直方图的作用分别是什么?
      2 见图5-4和图5-5,CD3阴性和阳性的百分含量分别是多少。
      3 LL象限代表双阳性细胞亚群。(对 错)
      4 见图5-6和图5-7,淋巴细胞(CD3+/CD19-)的百分含量是多少。
      5 只能使用矩形设定细胞区域范围。(对 错)
      6 使用区域设定法分析样本有哪些不足。
      7 避免细胞亚群移动的分析方法是什么。
      8 在定量分析中我们使用哪些分析方法检测阳性率。
      5.5 CellQuest和CellQuest Pro软件使用
      CellQuest和CellQuest Pro软件是目前运用最为广泛的流式细胞仪采集及分析软件。它运行于苹果电脑上,优质的矢量图显示使得操作界面特别优美。现最新的微软公司的Vista软件也是仿苹果操作系统界面的,可想而知在使用CellQuest和CellQuest Pro时的强大功能及视觉质感。CellQuest和CellQuest Pro软件主安装在BD FACSCalibur型流式细胞仪上。
      1.软件数据流程
      在CellQuest和CellQuest Pro软件的数据流分为二个部分:方案和数据包。方案是指用户可以建立采集或分析所需的直方图或散点图、设门并定义门与门、门与图之间的逻辑关系。可以使用方案进行数据采集或分析以往已有的数据。每个采集方案分析样本后会生成数据包,该数据包中包括了样本中每个颗粒在各个检测参数上的数值,格式为FCS2.0或FCS3.0.
      数据包必须由方案文件打开,无法单独显示,或者可由第三方软件进行分析,如WinMDI.
      2.软件与仪器的连接
      流式细胞仪需要加电开启后会向计算机发出信息,所以如要进行实验需要先开启流式细胞仪,然后再开启计算机。
      1、x09先开仪器后开计算机,以确保仪器和计算机之间的正常通讯。
      2、x09在苹果菜单下点击CellQuest和CellQuest Pro软件。
      3、x09从Aquire菜单下选择connet to cytometer.
      3.方案与数据之间的关系
      CellQuest和CellQuest Pro软件的方案与数据相互独立保存,数据包可以由任一方案文件进行分析,分析后不改变数据包中的任何数据。CellQuest和CellQuest Pro软件中方案内的直方图或散点图有三种状态:Acquire,Analysis和Acquire-Analysis.
      当图的属性为Acquire时,此图只限于采集下用,即只当进行检测时它才能显示颗粒;
      当图的属性为Analysis时,此图只限于分析已保存的数据包,它不能用于采集数据。
      当图的属性为Acquire-Analysis时,此图即可用于采集数据也可用于分析已有数据。
      所以方便起见,我们一般将方案中的直方图或散点图全部设为Acquire-Analysis属性。
      CellQuest Pro CellQuest
      4.方案的建立
      A选择实验参数
      默认情况下,FACSCalibur流式细胞仪开机后只打开一根激光器,及五个参数供选择使用:FS、SS、FL1、FL2、FL3.当我们要使用第二根激光器及FL4通道时需要勾选FL4的选项,仪器自动打开633nm激光器。
      B,建立散点图或直方图,命名坐标
      CellQuest Pro软件主要工作界面,软件类似于Office word的工作面,可在A4大小的页面上进行编辑建立各种直方图或散点图。
      在CellQuest软件下,需在选择Plot菜单,选择Format来打开图的属性对话框,其中包括了关于该图所有选项。
      建立好直方图或散点图后,我们需要对所选的参数进行命名,如不修改软件自动命名为FS、SS、FL1、FL2、FL3和FL4.
      在菜单上选择Acquire栏目,选择Parameter Description,可出现关于文件存储和参数命名的对话框。在这个对话框中用P字母来代表每个参数,并在此对每个采集参数进行命名,FL1为CD3FITC,FL2为CD4PE……
      C,设门并建立门与图之间的关系
      R与G的关系
      R是Region的首个字母,Region一般是指一个闭合形的区域,如矩形区、自由区和圆形区。区域与区域之间可以进行逻辑运算,如AND、OR、NOT等关系。当区域进行运算时软件引进了算术公式的管理概念:
      Gate实际了个代数式,简称G,其运算式默认如下:
      G1 = R1,或G2=R2
      当我们要进行逻辑运算时,可变更为G1=R1 AND R2.此时G1就成了一个算术结果了。
      G1=R1 AND R2
      G2=R1 NOT R2
      G3=R1 OR R2
      Region List管理门,可以重命名或删除门。Gate List是对门进行逻辑运算和标识颜色的工具。
      建立门与图之间的关系
      打开要编辑的直方图或散点图的属性对话框,选择Gate选项,选择门即可。
      D,显示统计参数
      5.仪器的操作
      当计算机与流式细胞仪联机后便会出现以下采集控制框:
      在有关仪器操作所有控制选项框都在Cytometer下拉菜单下,同时按住“苹果”键及1、2、3、4便可调取所有控制框:
      6.文件的保存及调用
      实验或分析过程中所建的方案可以保存下来,通File下拉菜单可以保存这些方案文件:
      如要打开这些分析方案只需双建方案图标即可;方案可以分析以往的数据包(前提是方案中的直方图或散点图都已定义成Acquire-Analysis属性),有两种方案打开以往的数据:
      方法一:选择直方图或散点图,打开该图的属性框(Plot-》Format),见下图:
      在以上红色框标注的地方选择要分析的数据包。
      方法二:选中方案中所有的直方图或散点图,打开Plots菜单,选择Chang Data File,打开要分析的数据包。
    你贴一个图上来,就图说容易一些。

    散点图,横坐标和纵坐标一般都是不同的荧光。
    一般都有的是FSC和SSC。这个一般代表细胞的大小FSC和内部的折光性SSC。
    其他的散点图,可以代表双重染色时,每种荧光的信号强弱
    Flowjo可以读取FCS格式的文件,一般的流式细胞仪都产生这个格式的文件。把FCS文件导入Flowjo后,双击导入的文件,默认打开的是FSC,SSC 点状图,你可以根据具体的使用更换坐标,或者设定gate
    流式细胞仪(Flow cytometry )是对细胞进行自动分析和分选的装置。它可以快速测量、存贮、显示悬浮在液体中的分散细胞的一系列重要的生物物理、生物化学方面的特征参量,并可以根据预选的参量范围把指定的细胞亚群从中分选出来。多数流式细胞计是一种零分辨率的仪器,它只能测量一个细胞的诸如总核酸量,总蛋白量等指标,而不能鉴别和测出某一特定部位的核酸或蛋白的多少。也就是说,它的细节 分辨率为零。
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